Entwicklung eines Rasterionenleitfähigkeitsmikroskops zur Untersuchung morphologischer und mechanischer Besonderheiten von menschlichen Thrombozyten

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URI: http://hdl.handle.net/10900/170416
http://nbn-resolving.org/urn:nbn:de:bsz:21-dspace-1704166
http://dx.doi.org/10.15496/publikation-111743
Dokumentart: PhDThesis
Date: 2027-07-06
Language: German
Faculty: 7 Mathematisch-Naturwissenschaftliche Fakultät
Department: Physik
Advisor: Schäffer, Tilman E. (Prof. Dr.)
Day of Oral Examination: 2025-07-07
DDC Classifikation: 500 - Natural sciences and mathematics
530 - Physics
570 - Life sciences; biology
610 - Medicine and health
Keywords: Rasterionenleitwertmikroskop , Thrombozyt , Osmotischer Druck , Osmose , Stetigkeit
Other Keywords: Nicht-Osmotischer Anteil
Osmotisches Schwellen
hypotonischer Schock
Plättchenvolumen
SICM
hypotonic shock
osmotic compression
scanning ion conductance microscopy
microcontact printing
biochemical confinement
hypotonic shock
platelet volume
non-osmotic fraction
platelet activation
License: http://tobias-lib.uni-tuebingen.de/doku/lic_ohne_pod.php?la=de http://tobias-lib.uni-tuebingen.de/doku/lic_ohne_pod.php?la=en
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Inhaltszusammenfassung:

Um zellbiologische Prozesse unter physiologischen Bedingungen hochauflösend und nicht-invasiv untersuchen zu können, wurde ein neuer Aufbau für die Rasterionenleitfähigkeitsmikroskopie (SICM) entwickelt. SICM ermöglicht die quantitative, kontaktfreie Erfassung topographischer und mechanischer Eigenschaften lebender Zellen mittels einer Nanopipette, deren Ionenstrom in Abhängigkeit vom Abstand zur Zelloberfläche gemessen wird. Der entwickelte Aufbau zeichnet sich durch verbesserte Benutzerfreundlichkeit und hohe Bildraten aus (<7 s/Bild bei 40×40 Pixeln), unter anderem durch die Integration eines Annäherungsmotors und eines Systems zum Flüssigkeitsaustausch während laufender Messungen. Damit konnten erstmals dynamische Volumenänderungen einzelner menschlicher Thrombozyten unter hypotonischem Schock mit einer Auflösung von 0.1 fL analysiert werden. Die Zellen zeigten hierbei eine aktive Volumenregulation, deren Geschwindigkeit und Effizienz quantitativ beschrieben wurde. Zudem wurde der Einfluss verschiedener Aktivatoren (Thrombin, Kollagen, ADP) sowie eines Volumenregulationsinhibitors auf dieses Verhalten untersucht. Aktivierte Thrombozyten zeigten dabei ein ausbleibendes Regulationsverhalten. Besonders interessant war die Beobachtung, dass Thrombin- und ADP-aktivierte Zellen trotz Reduktion des nicht-osmotischen Zellanteils ihr Gesamtvolumen konstant hielten – ein Hinweis auf wasservermittelte Volumenkompensation. Zusätzlich wurde gezeigt, dass das Zellvolumen mit der mechanischen Steifigkeit der Thrombozyten korreliert: Zunehmendes Volumen ging mit abnehmender Steifigkeit einher. Diese Korrelation blieb auch unter verschiedenen Bedingungen (z. B. bei Zellspreading oder unter aktinhemmender Behandlung mit Cytochalasin D) erhalten. Damit konnte eine robuste, behandlungsunabhängige Beziehung zwischen Volumen und Steifigkeit etabliert werden. Insgesamt belegt diese Arbeit die Leistungsfähigkeit des neuen SICM-Systems zur hochauflösenden Echtzeit-Charakterisierung lebender Zellen und liefert neue Erkenntnisse zur Volumenregulation und mechanischen Eigenschaften von Thrombozyten – mit potenzieller Relevanz für die Untersuchung krankheitsrelevanter Prozesse.

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